enzymes.bio

Tannase(單寧酶):茶飲澄清、去澀、沒食子酸生成與多酚生物轉化的酵素應用

Enzymes.bio 研究團隊 · 紐西蘭威靈頓 · June 21, 2026

⇩ 下載 PDF
現貨供應 — 線上訂購 1 公斤裝:購買 Tannase →

Tannase(單寧酶,tannin acyl hydrolase,EC 3.1.1.20)是一種能水解可水解性單寧中酯鍵與 depside 鍵的酵素,主要用於茶飲澄清、降低澀味、調整多酚組成,以及由單寧基質生成沒食子酸(gallic acid)。在食品與飲料加工中,tannase 的價值不在於「去除所有多酚」,而是選擇性切除 galloyl 結構,使沉澱、澀感與萃取物穩定性更容易被控制。Enzymes.bio 供應的 tannase 以 1 kg 單位線上販售,CoA 與 SDS 會隨訂單提供,適合作為 B2B 使用者評估製程整合的酵素原料之一。

Tannase 是什麼:從「單寧水解」到「多酚重塑」

Tannase 又稱 tannin acyl hydrolase,屬於水解酶中的酯酶類,典型反應是切斷 gallotannins、部分 ellagitannins、galloylated catechins 或其他沒食子酸酯類分子中的酯鍵;在某些單寧結構中,也可作用於 galloyl 基團之間的 depside 鍵。其產物常包含沒食子酸、去 galloyl 化的糖類或多酚片段,因此 tannase 在食品加工中常被視為「多酚結構調整酵素」,而不只是單純的澄清助劑[1]

從來源來看,tannase 可由真菌、細菌、酵母與植物等生物產生;工業與研究文獻中最常見的是微生物來源,原因是微生物發酵較容易放大,且不同菌種可提供不同的 pH 耐受性、熱穩定性與底物偏好。近年研究也持續從酵母、乳酸菌、厭氧菌、黑酵母與環境分離菌中尋找新型 tannase,以滿足茶飲、果汁、農業副產物轉化與環境處理等不同需求[2]

對 B2B 使用者而言,理解 tannase 的關鍵不是背誦單一酵素參數,而是掌握三個問題:第一,待處理原料中的單寧與 galloyl 化多酚是什麼;第二,製程目標是澄清、去澀、釋放沒食子酸,還是改變功能性成分輪廓;第三,該製程的 pH、溫度、固形物、金屬離子與其他添加物是否會影響酵素表現。文獻反覆指出,tannase 的效果與來源、底物結構與反應環境密切相關,因此同樣稱為 tannase 的酵素,在茶湯、果汁、植物萃取物或廢水中的結果可能並不相同[3]

作用機制:為什麼 tannase 能降低澀味與沉澱?

水解 galloyl 結構,改變多酚的結合行為

茶飲與許多植物萃取物的澀味,與多酚和唾液蛋白、食品蛋白或其他大分子之間的結合有關。含 galloyl 基團的兒茶素與單寧通常更容易與蛋白質形成複合物;當 tannase 切除 galloyl 基團後,分子疏水性、氫鍵能力與立體結構會改變,與蛋白質形成不溶性聚集體的傾向通常下降,因而有助於降低澀味與冷藏渾濁[4]

在茶飲系統中,這個機制特別重要。綠茶與紅茶萃取液在冷卻、濃縮或貯存後可能出現「tea cream」或沉澱,與 gallated catechins、茶黃素、咖啡因、蛋白質、多醣與金屬離子等交互作用有關。tannase 透過去 galloyl 化作用降低部分多酚的聚集能力,使萃取液在冷藏或即飲包裝條件下更容易維持透明度與口感穩定[1]

釋放沒食子酸,創造下游轉化價值

當 tannase 水解 gallotannins 或 tannic acid 類底物時,會釋放沒食子酸。沒食子酸是食品、化工與醫藥相關製程中常見的酚酸中間體,也可作為進一步合成酯類或抗氧化相關材料的原料。以酵素反應取代強酸、強鹼或高溫水解的吸引力在於反應條件較溫和,副反應較少,但實際經濟性仍取決於基質成本、反應效率、純化需求與製程放大條件[5]

單寧酶可將大型可水解單寧與沒食子酸酯轉化為較小的酚類化合物,如沒食子酸,降低其形成不溶性複合物的傾向。
Figure 1. 單寧酶可將大型可水解單寧與沒食子酸酯轉化為較小的酚類化合物,如沒食子酸,降低其形成不溶性複合物的傾向。

值得注意的是,tannase 不只參與水解,也曾被研究用於沒食子酸酯類的酵素合成。早期以微膠囊化 tannase 進行沒食子酸酯合成的研究顯示,有機溶劑環境與酵素底物專一性會明顯影響產物形成,這說明 tannase 在低水活性或非典型食品系統中也可能展現合成方向的催化潛力[6]

底物專一性不是固定值,而是結構與環境共同決定

不同來源 tannase 對 tannic acid、methyl gallate、galloylated catechins、ellagitannins 或複雜植物單寧的偏好可能不同。Clostridium butyricum 編碼的三種 tannase 被比較時,即顯示結構多樣性與底物偏好存在差異;這類研究提醒使用者,不應假設所有 tannase 對所有 galloyl 類底物都能達到相同轉化效果[3]

酵素專一性也會受反應環境影響。以茶飲為例,近期研究指出 chlorogenic acid 可能抑制 tannase 介導的去澀作用,機制與酵素—底物互動及多酚之間的競爭或干擾有關。這代表在含多種酚酸、兒茶素與植物萃取物的真實配方中,tannase 的效果需要以整體基質來理解,而不是只用單一模型底物推論[4]

主要應用一:茶飲澄清、冷穩定與口感調整

茶產業是 tannase 最成熟的應用方向之一。即飲茶、濃縮茶萃取物、茶粉復水飲品與機能性茶萃取物都可能面臨冷藏渾濁、沉澱、澀味過強或風味不穩定等問題;tannase 透過水解 gallated catechins 與相關單寧結構,可降低茶萃取液形成不溶性複合物的傾向,因此被廣泛討論於茶飲澄清與品質改善[1]

在綠茶中,EGCG、ECG 等 gallated catechins 是澀味與沉澱形成的重要參與者。tannase 去除 galloyl 基後,可生成相對去 galloyl 化的 catechins 與沒食子酸,進而改變苦澀平衡、透明度與功能性多酚組成。近年針對綠茶 infusion 的研究甚至透過理性設計與定點突變提升 tannase 熱穩定性,顯示茶飲加工對更穩定 tannase 的需求仍在增加[7]

單寧酶不同於果膠酶、蛋白酶、纖維素酶與澱粉酶,因為它作用於單寧中的酯鍵與縮酚酸鍵,而非果膠、蛋白質、纖維素或澱粉。
Figure 2. 單寧酶不同於果膠酶、蛋白酶、纖維素酶與澱粉酶,因為它作用於單寧中的酯鍵與縮酚酸鍵,而非果膠、蛋白質、纖維素或澱粉。

然而,茶飲應用不是「酵素越多越好」。過度處理可能使多酚輪廓改變過大,影響原本茶香、收斂感與標示訴求;處理不足則可能無法改善冷藏渾濁。較實務的做法是將 tannase 視為製程中的結構調整工具,配合萃取濃度、pH、加熱步驟、澄清流程與包裝條件,尋找澄清度、風味與多酚保留之間的平衡[8]

主要應用二:果汁、植物萃取物與去澀處理

除茶飲外,tannase 也被應用或研究於富含單寧與多酚的果汁、植物萃取物與發酵基質。石榴、莓果、芭樂、柿子、camu-camu 及部分藥食植物原料可能含有 gallotannins、ellagitannins 或其他可水解單寧;這些成分雖與抗氧化能力和機能性訴求相關,但也可能帶來澀味、沉澱與色澤不穩定[9]

以 camu-camu 的 galloylated ellagitannins 為例,Lactiplantibacillus plantarum 具有胞外 tannase 活性的研究顯示,乳酸菌相關 tannase 可參與 galloyl 化 ellagitannins 的生物轉化,改變多酚衍生物組成。這類結果對發酵飲品、植物萃取液與功能性原料開發有啟發性,因為 tannase 可與微生物發酵共同塑造最終代謝物輪廓[10]

不過,果汁與植物萃取物比茶湯更複雜。果膠、多醣、蛋白質、有機酸、花青素、金屬離子與不同酚酸都可能影響 tannase 的作用結果。對於以感官改善為目標的產品,tannase 可能降低澀味;對於以保留特定多酚為訴求的產品,則需避免把目標成分轉化過度。因此,tannase 在此類應用中的價值,是提供可控的多酚重塑,而非單向度的「去單寧」[11]

主要應用三:沒食子酸生產與農業副產物升值

許多農業副產物含有可水解性單寧,例如某些木材、樹皮、果皮、種子外殼或植物殘渣。若直接丟棄或低價利用,這些多酚資源價值有限;若透過 tannase 轉化,則可釋放沒食子酸或生成更易進一步加工的酚類片段。以 Swietenia macrophylla 為基質、使用 Bacillus gottheilii M2S2 tannase 進行半固態發酵生產沒食子酸的研究,即呈現了農業或植物性基質轉化的可行方向[5]

這類應用的技術邏輯與飲料澄清不同:飲料加工通常追求感官與穩定性,副產物轉化則追求產物濃度、轉化率、純化可行性與整體成本。tannase 的優勢在於反應條件相對溫和,且可針對 galloyl 酯鍵進行選擇性切割;限制則在於天然基質組成變異大,前處理、固液比、反應時間與下游分離都會決定最終可行性[12]

在茶葉加工中,單寧酶會在後續分離前使茶多酚脫沒食子醯基,以減少茶乳、混濁與低溫不溶性。
Figure 3. 在茶葉加工中,單寧酶會在後續分離前使茶多酚脫沒食子醯基,以減少茶乳、混濁與低溫不溶性。

此外,tannase 也可能與其他酵素共同使用,例如纖維素酶、果膠酶或半纖維素酶協助打開植物細胞壁,提高單寧基質可及性。不過,這類複合酵素策略需要以實際原料與目標產物來設計,不能直接從單一 tannase 文獻外推至所有農業副產物[13]

主要應用四:鞣製廢水與高單寧廢液處理

皮革鞣製、植物萃取、食品加工與部分農產處理流程可能產生含單寧廢水。高分子量單寧會造成廢水色度、化學需氧量與生物處理負荷,也可能抑制部分微生物活性。tannase 的潛在角色是把大型或複雜單寧切割成較小分子,使後續生物處理、吸附、氧化或資源回收更容易進行[14]

已有研究比較來自 Lactobacillus plantarum 與 Staphylococcus lugdunensis 的 tannase 表現與固定化應用於鞣製廢水處理,顯示 tannase 在環境工程上並非只停留於概念;但這類應用仍比茶飲加工更依賴現場條件,包括廢水組成波動、抑制物、酵素穩定性、固定化材料、停留時間與處理成本[14]

因此,環境應用可歸類為「具研究與工程潛力,但需要場域驗證」的方向。對 B2B 使用者而言,tannase 可作為含單寧廢液前處理或資源化策略的一部分,但不宜被描述為單獨解決所有廢水問題的通用方案[11]

應用比較:tannase 在不同場景中的技術重點

應用場景 主要處理對象 tannase 的核心作用 可能效益 證據成熟度與限制
即飲茶、綠茶萃取液 gallated catechins、茶單寧 去 galloyl 化,降低沉澱與澀感 改善澄清度、冷穩定、口感平衡 證據較成熟;效果受茶種、萃取條件與配方影響[1]
果汁與植物萃取物 gallotannins、ellagitannins、多酚複合物 分解可水解單寧,改變多酚輪廓 降低澀味、改善外觀與成分可利用性 中度證據;基質複雜,需避免目標成分過度轉化[10]
沒食子酸生產 tannic acid、植物單寧基質 水解酯鍵釋放 gallic acid 副產物升值、溫和轉化路徑 技術可行;經濟性取決於原料與下游分離[5]
鞣製廢水與高單寧廢液 聚合單寧、鞣製殘留多酚 降解高分子單寧,提高後續處理性 降低處理負荷、改善生物處理相容性 具潛力;需現場工程驗證[14]
酵素合成與酯化 沒食子酸與醇類底物 在特定低水或有機相環境中催化酯形成 製備 gallate esters 研究型應用;受溶劑、固定化與底物選擇影響[6]

製程整合時應理解的關鍵變因

pH、溫度與基質條件

tannase 的適用 pH 與溫度範圍會因來源而異。部分真菌或酵母來源 tannase 適合酸性食品系統,某些細菌或重組 tannase 則被研究用於較高溫或特定 pH 條件。近年文獻針對 thermostable tannase 的表現有多篇報導,反映出產業對熱穩定、製程耐受與加工彈性的需求正在提高[15]

當可水解單寧或沒食子醯化化合物導致混濁、沉澱、澀味、抗營養效應或影響沒食子酸產量時,單寧酶的應用最具效益。
Figure 4. 當可水解單寧或沒食子醯化化合物導致混濁、沉澱、澀味、抗營養效應或影響沒食子酸產量時,單寧酶的應用最具效益。

但在實務上,pH 與溫度不能只看酵素本身,也要看底物狀態。茶多酚在不同 pH 下氧化、聚合與沉澱行為不同;果汁中的有機酸與金屬離子會改變多酚結合;植物萃取物中的膠體與懸浮固形物也會影響酵素接觸底物的效率。也就是說,tannase 的反應不是孤立發生,而是在整個食品或工業基質中進行[1]

反應程度:從輕度去澀到深度水解

tannase 的處理程度會決定產品結果。輕度處理可能只降低部分澀味與沉澱,保留較多原始多酚風味;深度水解則可能釋放更多沒食子酸,並大幅改變兒茶素或單寧組成。對茶飲而言,過度去 galloyl 化可能讓口感變薄或失去特定茶感;對沒食子酸生產而言,較高轉化則通常是目標之一[8]

因此,製程設計應以終端品質來回推反應條件,而不是只追求最大水解。常見的品質觀察指標包括外觀穩定、沉澱趨勢、澀味強度、目標多酚保留、沒食子酸生成與熱處理後穩定性;這些指標可由使用者依內部品管制度建立,不需要把 tannase 視為單一規格即可預測所有產品結果的添加物[9]

配方成分可能促進或干擾反應

多酚之間會互相競爭或干擾酵素作用。chlorogenic acid 對 tannase 介導去澀效果的抑制研究,提醒配方中若含大量咖啡酸衍生物、酚酸或其他植物萃取物,可能改變 tannase 對主要 galloyl 底物的有效反應。這對複方茶飲、草本飲品、果茶與機能飲料尤其重要[4]

金屬離子、蛋白質、多醣、乳化劑與其他酵素也可能影響結果。有些成分會改變單寧可及性,有些會與多酚形成複合物而降低酵素接觸機會,也有些可能在後段加熱或貯存時改變沉澱行為。換言之,tannase 的功能性需要與配方整體相容性一起評估[11]

不同來源 tannase 的差異:為什麼「同名酵素」不代表同樣效果?

tannase 不是單一分子,而是一類具相似反應功能的酵素。真菌 tannase、細菌 tannase、酵母 tannase 與乳酸菌 tannase 可能在分子大小、糖基化、熱穩定性、分泌性、底物通道與活性位點周邊結構上不同。這些差異會影響它們對 tannic acid、天然 gallotannins、ellagitannins 或 gallated catechins 的反應偏好[12]

在飼料處理中,單寧酶透過水解可水解單寧結構,降低單寧與蛋白質及消化酶的結合。
Figure 5. 在飼料處理中,單寧酶透過水解可水解單寧結構,降低單寧與蛋白質及消化酶的結合。

以 Debaryomyces hansenii 的 pH 穩定 tannase 為例,研究顯示其可進行 gallate esters 的生物轉化,並在特定 pH 條件下維持功能;這類酵母來源酵素對食品與發酵系統有參考價值,因為許多食品基質本身位於酸性環境[16]

Aureobasidium melanogenum T9 來源的耐熱 tannase 也被研究為食品與農業用途候選酵素,重點在於其分泌表現、熱穩定性與加工適用性。這些案例不表示所有 tannase 都具相同穩定性,而是說明酵素來源與蛋白質工程會深刻影響應用範圍[17]

結構研究亦提供機制線索。tannase-like feruloyl esterase FaeC 與 p-coumaric acid 複合物的晶體結構,雖然不等同於所有 tannase,但有助於理解這類 α/β hydrolase fold 酵素如何透過活性位點形狀、芳香族配體結合與催化殘基排列來決定底物辨識[18]

證據強度與合理期待

目前證據最充分的領域,是 tannase 對可水解性單寧與 galloyl 化多酚的水解能力,以及其在茶飲澄清、冷穩定與去澀上的應用。茶產業綜述指出,tannase 已被長期研究於改善茶萃取液品質,並且近年仍有針對熱穩定、風味與功能性成分調整的改良研究[1]

中度證據的領域包括果汁、植物萃取物、發酵基質與功能性食品。這些應用有清楚機制與實驗支持,但不同原料的多酚組成差異很大,處理後的抗氧化性、澀味、色澤與穩定性不一定朝同一方向變化。因此,tannase 應被視為可調整多酚輪廓的工具,而不是保證提升所有機能指標的添加物[19]

單寧酶可透過將複雜單寧分解為較小分子,在更廣泛的廢水處理與循環加工系統中發揮作用。
Figure 6. 單寧酶可透過將複雜單寧分解為較小分子,在更廣泛的廢水處理與循環加工系統中發揮作用。

較需工程驗證的領域包括大規模廢水處理、農業副產物資源化與 gallate ester 合成。這些方向在文獻中具有可行性,但商業化取決於基質供應、酵素穩定、反應器設計、下游分離、法規定位與成本結構。對企業而言,這些應用值得評估,但不宜以單篇研究結果直接推論量產效益[14]

使用與文件支援:Enzymes.bio 供應定位

Enzymes.bio 作為酵素供應商,提供 tannase 產品供 B2B 客戶在線上以 1 kg 單位購買;產品出貨時會隨訂單提供 CoA 與 SDS,便於使用者依內部品質、安全與倉儲流程管理。本文內容旨在協助理解 tannase 的科學背景與應用邏輯,不代表製造商製程說明,也不取代使用者自身的法規、配方與製程評估。

作為蛋白質性酵素原料,tannase 粉末在搬運時應避免吸入粉塵,並依 SDS 與企業內部安全規範使用適當防護。食品、飼料、化妝品、環境處理或化學轉化等不同用途,涉及的法規定位與最終產品要求並不相同,使用者需依所在地與產品類別確認合規性。

結論:tannase 的核心價值是可控的 galloyl 水解

Tannase 的產業價值來自其對 galloyl 酯鍵與相關單寧結構的選擇性水解能力。這個機制讓它能在茶飲中降低冷藏渾濁與澀味,在果汁與植物萃取物中調整多酚輪廓,在農業副產物中釋放沒食子酸,並在高單寧廢液處理中提供前處理或資源化可能[1]

對技術決策者而言,最重要的是把 tannase 視為「製程工具」而非單一效果保證。其表現取決於酵素來源、底物結構、pH、溫度、配方干擾物、反應程度與後段加工條件;當這些因素被合理整合,tannase 可成為食品飲料、植物萃取與多酚轉化製程中具有實用價值的生物催化選項[3]

線上訂購 Tannase

以 1 kg 單位販售,現貨供應,可立即出貨。請直接於我們的線上商店下單並付款,我們將為您處理訂單。每筆訂單皆附分析證明書與安全資料表。

購買 Tannase →

參考文獻

依首次引用順序編號。所有來源皆為開放取用資料,並於發布時確認可連線;正文中的引用編號會連結至此。

  1. Tang, Z., Shi, L., Liang, S., Yin, J., Dong, W., Zou, C., & Xu, Y. (2024). Recent Advances of Tannase: Production, Characterization, Purification, and Application in the Tea Industry. Foods, 14.
  2. Kushwaha, V., Patil, J. R., Nikalje, G., & Yadav, L. S. (2025). Exploration of Mangrove Endophytes as Novel Sources of Tannase Producing Fungi. Journal of Fungi, 11.
  3. Ristinmaa, A. S., Coleman, T., Cesar, L., Weinmann, A. L., Mazurkewich, S., Brändén, G., Hasani, M., … et al. (2022). Structural diversity and substrate preferences of three tannase enzymes encoded by the anaerobic bacterium Clostridium butyricum. Journal of Biological Chemistry, 298.
  4. Shen, Q., You, J., Xie, Z., Zhang, J., Zhou, Q., & Ruan, Z. (2025). Inhibitory effect of chlorogenic acid on tannase‐mediated astringency removal and its mechanism. The Journal of the Science of Food and Agriculture, 105.
  5. Borah, A., Selvaraj, S., & Murty, V. R. (2023). Production of Gallic Acid from Swietenia macrophylla Using Tannase from Bacillus Gottheilii M2S2 in Semi-Solid State Fermentation. Waste and Biomass Valorization, 14, 2569-2587.
  6. Yu, X., Li, Y., & Wu, D. (2004). Enzymatic synthesis of gallic acid esters using microencapsulated tannase: effect of organic solvents and enzyme specificity. Journal of Molecular Catalysis B-enzymatic, 30, 69-73.
  7. Zhou, H., Cao, S., Zhang, C., Wang, M., Tang, Y., Chen, J., Zhu, L., … et al. (2025). Enhancing the Thermostability of a New Tannase Through Rational Design and Site-Directed Mutagenesis: A Quality Improvement Strategy for Green Tea Infusion. Beverages.
  8. Ong, C., & Annuar, M. (2024). Potentialities of Tannase-Treated Green Tea Extract in Nutraceutical and Therapeutic Applications. Applied Biochemistry and Biotechnology, 196, 7534 - 7553.
  9. Kumar, S. S., Sreekumar, R., & Sabu, A. (2018). Tannase and Its Applications in Food Processing. Energy, Environment, and Sustainability.
  10. Pulido-Mateos, E. C., Lessard-Lord, J., Desjardins, Y., & Roy, D. (2024). Biotransformation of camu-camu galloylated ellagitannins by Lactiplantibacillus plantarum with extracellular tannase activity.. Food & Function.
  11. Natarajan, K., Rajendran, A., & Thangavelu, V. (2017). Tannase enzyme : The most promising biocatalyst for food processing industries.
  12. Dhiman, S., Mukherjee, G., Kumar, A., Mukherjee, P., Verekar, S., & Deshmukh, S. (2017). Fungal Tannase: Recent Advances and Industrial Applications.
  13. Sarwan, J., Vijaya, Uddin, N., & K, J. B. (2024). Enhanced Production of Microbial Cellulases as an Industrial Enzyme - A Short Review. Journal of Multidisciplinary Research Advancements.
  14. Chaitanyakumar, A., Somu, P., & Srinivasan, R. (2024). Expression and Immobilization of Tannase for Tannery Effluent Treatment from Lactobacillus plantarum and Staphylococcus lugdunensis: A Comparative Study. Applied Biochemistry and Biotechnology, 196, 6936 - 6956.
  15. Wu, J., Zeng, H., Zhong, X., Chen, X., Zhang, P., & Deng, Z. (2024). Cloning, purification and characterization of a novel thermostable recombinant tannase from Galactobacillus timonensis.. Enzyme and Microbial Technology, 184, 110575 .
  16. Song, L., Xiao-Wang, Feng, Z., Guo, Y., Meng, G., & Wang, H. (2023). Biotransformation of gallate esters by a pH-stable tannase of mangrove-derived yeast Debaryomyces hansenii. Frontiers in Molecular Biosciences, 10.
  17. Liu, L., Guo, J., Zhou, X., Li, Z., Zhou, H., & Song, W. (2022). Characterization and Secretory Expression of a Thermostable Tannase from Aureobasidium melanogenum T9: Potential Candidate for Food and Agricultural Industries. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 9.
  18. Ferousi, C., Kosinas, C., Nikolaivits, E., Topakas, E., & Dimarogona, M. (2023). Crystal structure of the Fusarium oxysporum tannase‐like feruloyl esterase FaeC in complex with p‐coumaric acid provides insight into ligand binding. FEBS Letters, 597.
  19. Cante, R. C., Nigro, F., Passannanti, F., Lentini, G., Gallo, M., Nigro, R., & Budelli, A. (2024). Gut health benefits and associated systemic effects provided by functional components from the fermentation of natural matrices.. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 23 3, e13356 .